HE染色實驗步驟：（1）樣品制備：對于貼壁生長細胞，胰酶消化，調整細胞濃度約1×105/ml，滴加于蓋玻片上(置于6孔板中)，培養相應時間后，取出細胞爬片，用PBS洗滌3次。（2）樣品固定：95%乙醇固定20min，PBS洗滌2次，每次1min。（3）染核：蘇木素染液染色2-3min，自來水洗滌。（4）分色：鏡下觀察，若細胞核染色過深，用1%鹽酸酒精溶液分色數秒，自來水洗滌。（5）染胞質：浸入伊紅染液染色1min，自來水洗滌。（6）吹干或自然晾干細胞爬片后，中性樹膠封片。若細胞用4%多聚甲醛固定，則染色時間相應延長，蘇木素染色12-15min，伊紅5min即可HE染色，南京英瀚斯，專業的實驗外包公司。浙江靠譜的HE染色

HE染色伊紅溶液中加入少量的冰醋酸(一般小于10%就行)，可改變組織等電點，促進伊紅與胞漿蛋白質結合，其本身不參與染色的反應。當蘇木素染色效能極高，很短時間就導致核漿共染時，可適當地添加冰醋酸(一般不超過2%)，抑制蘇木素染色效能，方便控制染色時間，同時也能提高蘇木素染色的清晰度?，F在有商用的HE染色液賣，但是質量參差不齊。如果課題組較大，完全可以自己配制，效果也挺好。配制為乙酸濃度5%-7.5%和鹽酸濃度為0.5%-1%的蘇木素溶液放置一周，即可完全成熟，染色效果好，氧化膜和結晶都很少(一般蘇木素中酸度越低越容易產生氧化膜和結晶，這也是提示更換蘇木素的標志之一)。內蒙古病理HE染色檢測HE染色規范化流程及注意事項？

HE染色：在組織病理學中，蘇木素-伊紅染色是一種日常使用比較普遍的常規染色方法。常規蘇木素染色的對比染色是用伊紅，也有采用焰紅，因為焰紅比伊紅色澤更鮮明，還有采用橘黃G，比布里希猩紅，波爾多紅等作為對比染色。伊紅是比較常用的胞質染料，本身溶于醇而不溶于水，為磚紅色粉末狀或醬紅色結晶。配方：伊紅Y（水溶）0.5-1g，蒸餾水99ml。如果取用伊紅Y（醇溶性）應當溶于99ml 75%或95%的乙醇中。如果在伊紅液中加入0.5ml冰醋酸，可以加速其染色過程，使得胞質的色澤更加艷麗。結果是細胞核呈藍色，胞質、肌肉、結締組織、紅細胞和嗜伊紅顆粒呈不同程度的紅色。鈣鹽和各種微生物也可染成藍色或紫藍色。

HE染色等常規染色，組化或是熒光優先推薦做石蠟切片。原因：石蠟切片對組織的形態保存比冰凍切片好，并且對抗原基本無影響。脂質染色（油紅O染**odipy染色，尼羅紅染色）必須做冰凍切片，不能做石蠟切片。以下染色必須要新鮮或冷凍組織冰凍切片：ROS染**-半乳糖甘酶染色，ATP染色，膽固醇染色。如果標本已經放在-80°冰箱冷凍了之后又想要做石蠟切片，將標本取出來千萬不要解凍直接放于固定液內固定（在固定液內邊解凍邊固定）。組織形態結構保存完好順序：新鮮組織立即投入固定液內固定石蠟切片＞組織-80°冷凍后投入固定液內固定石蠟切片＞新鮮組織立即投入固定液內固定冰凍切片＞組織-80°冷凍后直接冰凍切片。冰凍切片是否可以做HE染色？

HE染色細胞質過染分析及應對原因：（1）伊紅染色液濃度太高，特別是焰紅燃料、四溴四氯熒光素鈉的存在；（2）切片在伊紅染色時間過長；（3）切片在伊紅染色后經乙醇脫水步驟時過的太快，而使乙醇分化伊紅的作用不能產生。對策：適當稀釋伊紅染色液，減少伊紅染色時間，或者使切片在乙醇脫水等步驟時，停留時間相對均勻。同樣，也要檢查切片的厚度是否合適。切片中出現藍黑色沉淀物分析及應對原因：蘇木精染色液中的金屬膜，黏附在玻片上。對策：每天染色前仔細過濾蘇木精染色液，或建議使用半氧化蘇木精染色液，如Gill蘇木精染色液,可以避免過多的金屬膜產生。HE染色(脫蠟、水化、染色、脫水、封片) - 實驗方法。廣東HE染色分析

脾臟組織HE染色如何觀察。浙江靠譜的HE染色

HE染色全名蘇木精—伊紅染色法，屬于化學染色法，其主要依靠蘇木精染液為堿性，主要使細胞核內的染色質與胞質內的核糖體著紫藍色；伊紅為酸性染料，主要使細胞質和細胞外基質中的成分著紅色。實驗過程：1、石蠟切片脫蠟至水：依次將切片放入二甲苯Ⅰ20min-二甲苯Ⅱ20min-無水乙醇Ⅰ5min-無水乙醇Ⅱ5min-75%酒精5min，自來水洗。2、蘇木素染色：切片入蘇木素染液染3-5min，自來水洗，分化液分化，自來水洗，返藍液返藍，流水沖洗。3、伊紅染色：切片依次入85%、95%的梯度酒精脫水各5min，入伊紅染液中染色5min。4、脫水封片：切片依次放入無水乙醇I5min-無水乙醇II5min-無水乙醇Ⅲ5min-二甲Ⅰ5min-二甲苯Ⅱ5min透明，中性樹膠封片。5、顯微鏡鏡檢，圖像采集分析。結果判讀：細胞核呈藍色，細胞質呈紅色浙江靠譜的HE染色