子宮內膜異位癥模型造模方法選用非動情期大鼠，術前1 d予戊酸雌二醇0.2 mg/只灌服。手術在室溫28～32℃環境下進行，無菌操作。以10%水合氯醛3 mL/kg進行腹腔注射麻醉，將麻醉后的大鼠仰臥位固定于手術板上，腹部備皮，常規消毒鋪巾。大鼠下腹正中恥骨聯合上1 cm處以上取長約2～3 cm縱行切口，進腹后在膀胱背側找到“Y”字型子宮，游離右側子宮，近端離子宮角1 cm處結扎，遠端離卵巢1 cm處結扎，剪下右側子宮。將剪下的子宮組織放入盛有無菌生理鹽水的培養皿中，縱向剖開。將子宮內膜與肌層分離，剪取3塊3 mm×5 mm的內膜組織，用4-0號可吸收線將內膜面貼于種植部位，分別縫合在左側卵巢、宮骶韌帶以及左側遠離腹部切口的腹壁上。隨后用慶大霉素稀釋液沖洗腹腔，***用0號絲線分層縫合腹部切口，常規關腹。術后密切觀察大鼠呼吸、心率，待其自然蘇醒，正常喂養，觀察大鼠傷口及生活情況。術后第1天開始每只大鼠肌內注射慶大霉素0.1 mL，每天1次，連續7 d。術后第10天開始每天予戊酸雌二醇0.02 mg/kg灌服,連續5 d。子宮內膜異位癥模型的構建需要精確的實驗條件和操作技術。湖北真實的子宮內膜異位癥模型怎么造模

自體移植的子宮內膜異位癥模型可用子宮組織塊移植法和子宮內膜移植法:前者將動物子宮剪開后直接進行移植，后者將子宮內膜層與肌層分離后，種植內膜層。非人靈長類動物還可將子宮體向腹腔內翻轉，使經血逆流入腹腔形成病灶。目前大部分實驗選擇動物的動情期(采集陰道分泌物來確定)進行，認為此時形成模型成功率高。但有研究表明，在動物非動情期進行手術，術后補充一定量雌性因子，與動情期形成子宮內膜異位癥模型率差異元明顯性意義。浙江靠譜的子宮內膜異位癥模型怎么造模該模型有助于我們評估不同改善方法對子宮內膜異位癥患者的生活質量改善程度。

子宮內膜異位癥模型的觀察指標驗證模型是否成功：大鼠建模28d后再次手術，腹腔麻醉后固定，腹部備皮，消毒鋪巾，取原切口旁開腹，取出3個不同部位的移植物。記錄移植物大體特點。用游標卡尺測量移植物的長度、高度與寬度，按公式計算體積：體積=0.52×長×寬×高[4]。用電子天平稱取移植物質量。將取出的移植物和左側子宮的在位內膜標本用10%多聚甲醛固定，常規石蠟包埋，H-E染色，顯微鏡下觀察組織病理學變化來驗證模型的成功率。

與正常子宮內膜細胞相比，子宮異位內膜異位癥模型細胞的自噬相關基因（MAP1LC3B，也叫LC3B和BECN1，也叫Beclin1）表達水平明顯下降。通過將FCGR3- NK細胞分別與抑制自噬（3-MA-ESC和siATG5-ESC）、促進自噬（Rap-ESC）和未處理（Ctrl-ESC）的異位內膜細胞共培養，來模擬體內微環境，結果發現與未處理的ESCs共培養后FCGR3- NK細胞比例上升、而且KIR2DL1和KIR3DL1表達上調、NCR3, NCR2, IFNG, PRF1和GZMB表達下調；而與抑制了自噬的ESCs共培養的NK細胞這種變化更加強烈，與促進自噬的ESCs共培養則會減弱這些變化（Fig2）。該模型為我們揭示了子宮內膜異位癥中細胞信號傳導的異常變化。

子宮內膜異位癥自然發生的前提是有月經周期，非人靈長類動物可用于自發性模型的建立，其與人類疾病的發生位點相同，且形態學與人類相應部位的相同，以前人們認為自發模型很少在卵巢形成EM，因此與人類EM的發生可能存在差異，但Dick[町等的研究改變了這一理論，證實卵巢也易發病。而誘發性模型(除非人靈長類動物)不能完全模擬人類發生EM的過程、環境。因此，非人靈長類動物是比較好的模型，但其發病率低，約25%-35'3毛;周期在10年以上;且來源、少，所需經費昂貴。而誘發性模型成功率為759串-959島，實驗周期為2個月左右，來源普遍，價格較低，適合大樣本研究。該模型為我們提供了一個研究子宮內膜異位癥中神經-內分泌-免疫網絡失衡的平臺。小鼠子宮內膜異位癥模型動物實驗外包

研究人員正在利用子宮內膜異位癥模型探索新的改善手段。湖北真實的子宮內膜異位癥模型怎么造模

手術引起的子宮內膜異位癥的自體嚙齒動物模型的目標是模仿在女性的疾病。我們和其他人曾在小鼠或大鼠鏡觀察到，在婦女疾病5,6子宮內膜異位病灶觀察表明，改變基因的表達模式。鼠標在執行手術的優點之一是，大量的轉基因小鼠品系可以幫助研究人員確定的具體組成部分子宮內膜異位癥的建立和發展中的重要作用。另一種模式，即切除子宮內膜碎片是免疫功能低下小鼠的腹膜也被普遍使用，但受限于缺乏正常的免疫系統被認為是在子宮內膜異位癥2,7的重要。重要的是，手術引起的子宮內膜異位癥的小鼠模型是一個通用的模型已被用于研究免疫系統8，9,10和 11,12因子環境因素如何影響子宮內膜異位癥，以及子宮內膜異位癥的影響，對fertility 13和痛苦14。湖北真實的子宮內膜異位癥模型怎么造模