CRISPR基于sgRNA與基因組序列互補定位到靶位點，不論哪種CRISPR系統，都存在sgRNA序列不完全匹配但能夠結合基因組的脫靶現象，CRISPR定位到脫靶位點引發序列改變就屬于第二類風險。CRISPR技術誕生剛過10年，期間迅速取代TALEN和ZFN，成為學術界通用的基因編輯技術，也徹底改變了我們的生物學研究方法。為提高CRISPR技術的安全性，特別是往臨床應用發展時的安全性問題，研究者們一直以提高靶位點的編輯效率和準確性，同時降低脫靶位點編輯發生概率為目標，來優化CRISPR技術。另一方面，研究者們也開發了大量檢測方法，用于檢測CRISPR的靶向風險和脫靶風險，用于早期sgRNA序列的篩選，以期望獲得一個較為安全的sgRNA。基因編輯脫靶將無處隱藏。無錫off-target脫靶檢測實驗室

對于CAR修飾的免疫細胞，應采用多種體外方法評估其胞外抗原識別區的脫靶風險。TCR修飾免疫細胞的脫靶毒性可通過評估TCR與人體自身抗原肽的交叉識別能力來評估。首先，應采用體外試驗測定TCR修飾的免疫細胞與人自身抗原肽-HLA（與遞呈靶抗原肽的HLA等位基因相同）復合物的親和力，并說明抗原肽的選擇依據及選擇范圍。此外，還應研究其他相關或不相關的蛋白中是否含有靶抗原肽序列。如果TCR與人自身抗原肽有交叉反應可能，應確定靶抗原肽的較小識別基序（motif），并采用計算機預測分析評估交叉反應性。如果計算機預測可識別出具有潛在交叉反應性的抗原肽，應在體外測定TCR修飾免疫細胞對表達相應蛋白或遞呈相應抗原肽的的細胞的識別能力。如果不能排除交叉反應性，應基于含有潛在交叉反應性抗原肽的蛋白的表達模式以及TCR與潛在交叉反應性抗原肽的親和力來進行風險評估。為獲得TCR與其他等位HLA潛在交叉反應性的信息，應進行充分的HLA交叉反應性篩選。育種脫靶檢測分析針對已經獲得的有切割能力的sgRNA，需要進一步明確其體內脫靶效應。

BLESS：利用生物素標簽對DSBs進行原位標記，后經PCR擴增實現對于生物素標記片段的富集，并通過二代測序實現脫靶位點檢測。直接檢測細胞中的切割位點，靈敏度與細胞、組織密切相關。LAM-HTGTS，片段化的gDNA經過LAM-PCR引入接頭，然后進行全基因組易位測序。高通量的全基因組范圍檢測，可準確檢測DSBs引發的重排。GUIDE-Seq，將dsODN    s標簽整合到DSBs位點，通過二代測序檢測這些標簽所在的基因組區域，從而確定脫靶突變的位置。廣使用的細胞內檢測方法。能檢測低頻脫靶突變。Digenome-Seq，片段化的gDNA與CRISPR/RNP混合孵育，進行全基因組測序檢測脫靶。全基因組測序，直接檢測切割位點，能檢測低頻脫靶突變。

基因編輯產品除了適用基因zhiliao產品的一般考慮以及整合性載體的特殊考慮外，長期隨訪中還應額外關注脫靶風險，量化評估脫靶活性和在靶活性之間的相關性，或利用在靶活性來預測脫靶活性的水平。在開發過程中應同時關注基因轉導效率、脫靶效率、插入突變情況、目的基因在靶細胞中整合位點及表達。評估基因zhiliao產品整合進基因組的可能性，判斷是否需要開展另外的遺傳毒性研究，評估插入突變（插入位點、插入拷貝數等）引起的遺傳毒性風險。需要關注脫靶編輯、轉座子轉座印跡引起的遺傳毒性問題；鑒定/表征基因組整合位點。非臨床研究是藥物開發的重要環節之一。基因編輯治療過程中安全性評價，即脫靶效應的檢測。

細胞經基因修飾后會改變其生物學特性，同時也會帶來新的安全性風險，如基因編輯脫靶風險、載體插入突變風險、載體重組風險、表達的轉基因產物的風險等。在制定非臨床研究計劃時，除參考《細胞zhilliao產品研究與評價技術指導原則》（試行）中的對細胞zhilliao產品的一般要求外，還應具體問題具體分析，基于產品特點和目前已有的科學認知，結合擬定適應癥、患者人群、給藥途徑和給yaofang案等方面的考慮，科學合理的設計和實施非臨床研究，充分表征產品的藥理學、毒理學和藥代動力學特征。在進行獲益風險評估時，還應重點關注由非臨床向臨床過渡時非臨床研究的局限性和風險預測的不確定性。可以與靶基因之外的其他基因作用而非特異性阻斷基因表達,即產生非靶基因的沉默效應。育種脫靶檢測分析

crispr脫靶檢測，推薦唯可生物，實驗實力強，專業性高，檢測效率高，結果準確率高。無錫off-target脫靶檢測實驗室

CRISPR/Cas9的問題：和TALEN和ZFNS技術一樣，CRISPR/Cas9技術在應用時也存在一定概率的脫靶問題——Cas9核酸酶在非目標位點發生切割，引入非預期的基因突變。脫靶切割引入的突變可能會直接破壞細胞的基本功能，帶來不可預控的嚴重后果。如何減輕脫靶效應？gRNA的GC含量：gRNA 的序列結構對CRISPR/Cas9基因編輯的靶向活性有影響。gRNA 序列中 40%–60%的 GC 含量可以增加靶向活性，因為較高的 GC 含量穩定了DNA：RNA 雙鏈體并破壞了脫靶結合。gRNA-on-gRNA序列的位置對編輯有影響，位于四個核苷酸末端的嘌呤殘基可以提高編輯效率。鳥嘌呤優先選擇在gRNA的20位，胞嘧啶優先選擇在16位以增加靶向編輯。無錫off-target脫靶檢測實驗室