基因zhiliao產品特有的可能會引起遲發性不良反應的風險因素包括：基因組整合活性基因zhiliao產品可能會采用修飾宿主基因組的技術，并有可能在宿主細胞或組織中持續存在。很多基因zhiliao載體的基因整合不會指向基因組的特定位點，可能在整合位點處產生插入突變、或jihuo整合位點附近的原基因等，進而破壞重要基因功能或增加惡性liu的風險，例如，國外已有多項研究報告在接受了使用γ-逆轉錄病毒載體轉導的基因修飾細胞zhiliao的受試者中發生白血病。因此，對于存在此類風險的產品，有必要進行長期隨訪臨床研究以評估出現遲發不良反應的風險。脫靶檢測評估，推薦唯可生物，實驗實力強，專業性高，檢測效率高，結果準確率高。溫州育種脫靶檢測分析

以上長期隨訪時間的建議主要基于基因zhiliao的產品類型，具體產品的隨訪時間取決于產品的特性和體內存在時間、轉基因表達時間、遲發性不良反應的預期時間及發生率、受試者適應癥和預期生存期、給藥途徑、以及長期隨訪的其他觀察目的。隨著隨訪數據的積累，研究者和研究申辦方可能會根據產品的存在情況、轉基因表達和臨床表現的持續評估情況，延長或縮短長期隨訪的持續時間。如果研究申辦方認為其基因zhiliao產品安全性風險較低、無需開展長期隨訪臨床研究，或者希望變更隨訪時間，應合理說明依據或變更理由并與藥品監督管理部門進行溝通。南通高精度脫靶檢測報告脫靶檢測安評，推薦唯可生物，實驗實力強，專業性高，檢測效率高，結果準確率高。

CIRCLE-seq原理。細胞內檢測方法由于提純的基因組已經消化去除了組蛋白，結構較細胞內的染色質更為松散，理論上容易找到更多的脫靶位點。為捕獲CRISPR在細胞內工作時真實發生的脫靶切割，研究者們也設計了一些細胞內的脫靶位點檢測方法。1) Guide-seqCRISPR造成DNA雙鏈斷裂后，由于DNA修復機制的存在，斷裂處很快就會重新連接，這時候提純基因組DNA很難保留CRISPR造成的DNA斷裂位點。所以為了記錄細胞內真實的CRISPR脫靶切割，研究者們設計了Guide-seq[10]，利用NHEJ的DNA修復機制，將一段雙鏈短核苷酸序列（dsODN）連接到CRISPR造成的DNA雙鏈斷裂處，相當于連接了一輪接頭，然后再正常打斷基因組，在另一側連接第二輪接頭。通過這種方式構建的文庫，就可以獲取脫靶位點一側的序列。雖然每次CRIPSR導致的DNA雙鏈斷裂并不一定都會連接dsODN，但反過來說，越容易連接dsODN的位點，其發生脫靶切割的概率越高。通過Guide-seq找到的脫靶位點偏少，但一般都是可信度較高的脫靶位點，Guide-seq也是目前比較公認的一種脫靶檢測方法。

CRISPR/Cas9的問題：和TALEN和ZFNS技術一樣，CRISPR/Cas9技術在應用時也存在一定概率的脫靶問題——Cas9核酸酶在非目標位點發生切割，引入非預期的基因突變。脫靶切割引入的突變可能會直接破壞細胞的基本功能，帶來不可預控的嚴重后果。如何減輕脫靶效應？gRNA的GC含量：gRNA 的序列結構對CRISPR/Cas9基因編輯的靶向活性有影響。gRNA 序列中 40%–60%的 GC 含量可以增加靶向活性，因為較高的 GC 含量穩定了DNA：RNA 雙鏈體并破壞了脫靶結合。gRNA-on-gRNA序列的位置對編輯有影響，位于四個核苷酸末端的嘌呤殘基可以提高編輯效率。鳥嘌呤優先選擇在gRNA的20位，胞嘧啶優先選擇在16位以增加靶向編輯。高深度全基因組重測序服務,該方法能多方位精細地對基因編輯的細胞或個體進行off-target檢測。

CIRCLE-Seq，將gDNA打斷并環化，環化的DNA與CRISPR/RNP孵育，NGS測序檢測線性化的DNapian段，確定脫靶位點。PCR富集后測序，成本相對較低，能檢測低頻脫靶突變。安必奇sgRNA脫靶效應評估，安必奇生物提供sgRNA脫靶效應評估服務，幫助您挑選高度特異，脫靶率低的sgRNA進行后續實驗。同時，我們也協助您檢測分析基因編輯后細胞樣品的脫靶情況，通過各種高通量測序檢測技術，我們能準確的分析全基因組范圍內的脫靶位點，推動CRISPR/Cas9技術在zhiliao藥物開發和臨床研究中的應用。我們的優勢：靈敏度高：能檢測低頻脫靶突變★準確性高：檢測結果可通過實驗驗證★多種檢測方法可選擇以滿足不同的實驗需求內基因編輯技術可能造成的脫靶效應,建立了一種被命名為GOTI。上海crispr脫靶檢測安評

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目前鼓潤已掌握了該項技術，簡述如下：1、CRISPR與dsODNtag整合的實驗技術及高通量測序建庫流程將靶向于目標基因組位點的CRISPR質粒與dsODNtag以核電轉的方式同時轉染入真核細胞，CRISPR造成基因組雙鏈斷裂后，dsODNtag將整合入斷點處，作為后續分析在靶與脫靶情況的標記。轉染后3天收集細胞的DNA進行高通量建庫。2、GUIDE-seq生信分析方法1）搭建了高通量測序的數據分析流程。2）利用該技術分析了CRISPR靶向編輯某細胞系基因的在靶與脫靶情況。其中一例樣品的分析結果如圖4所示：Sequencesofoff-targetsitesidentifiedbyGUIDE-seq.Theintendedtargetsequenceisshowninthetoplinewithcleavedsitesshownunderneathandwithmismatchestotheon-targetsiteshownandhighlightedincolor.GUIDE-seqsequencingreadcountsareshowntotherightofeachsite.3）利用PCR擴增技術聯合Sanger測序鑒定了分析出的脫靶位點。溫州育種脫靶檢測分析