1983年，外泌體初次于綿羊網織紅細胞中被發現，1987年Johnstone將其命名為“exosome”。多種細胞在正常及病理狀態下均可分泌外泌體。其主要來源于細胞內溶酶體微粒內陷形成的多囊泡體，經多囊泡體外膜與細胞膜融合后釋放到胞外基質中。所有培養的細胞類型均可分泌外泌體，且外泌體天然存在于體液中，包括血液、唾液、尿液、腦脊液和乳汁中。有關他們分泌和攝取及其組成、“運載物”和相應功能的精確分子機制剛剛開始研究。外泌體目前被視為特異性分泌的膜泡，參與細胞間通訊，對外泌體的研究興趣日益增長，無論是研究其功能還是了解如何將其用于微創診斷的開發。如何高效地提取外泌體是實現這項新興液體活檢技術臨床常規化應用的關鍵直接把外泌體從尿液中沉降下來，無須分離培養人尿液來源細胞并收集培養基。唐山正規外泌體提取試劑廠家

外泌體（Exosome）是細胞主動分泌的囊泡樣小體，大小均一，直徑30-200nm，密度1.10-1.18g/ml，來源普遍，幾乎所有細胞都可分泌，在血液，尿液，唾液，腦脊液，腹水，乳汁等體液中普遍分布。外泌體較早在1986年發現于培養的綿羊紅細胞上清液中。1996年，研究者發現外泌體作為抗原呈遞因子參與T細胞依賴的抗一些病癥反應，開啟了外泌體蛋白研究的新天地。2013年諾貝爾生物/醫學獎解答了細胞如何組織其內部較重要的運輸系統之一——囊泡傳輸系統的奧秘。重慶正規外泌體提取試劑平均價格外泌體目前被視為特異性分泌的膜泡，參與細胞間通訊。

外泌體可通過流式、WB（檢測指標有CD9,CD63,CD81）、電鏡觀察、NTA粒徑追蹤等手段檢測，普遍應用于藥物載體、疾病診斷marker、精細醫療、一些病癥治病等方面研究。由于外泌體直徑小，樣本含量低，提取十分困難。已有的外泌體分離方式有密度梯度離心、超濾離心法、免疫磁珠抗體捕獲、商用試劑盒等。但到目前為止，仍沒有一種提取方法能同時保證外泌體的含量、純度以及生物活性。外泌體是細胞間進行物質運輸和信息交流的重要工具，可以通過調節免疫功能促進一些病癥的增殖，血管新生和一些病癥轉移。與細菌傳染，幫助細菌逃避免疫關系很大，并與心血管疾病，老年癡呆等疾病具有密切關系。

外泌體提取：1、過濾。超濾膜也可用于分離外泌體。根據外泌體的大小，從蛋白質和其他大分子中分離外泌體。較常見的過濾膜具有0.8μm、0.45μm或0.22μm的孔徑，可用于收集大于800nm、400nm或200nm的外泌體，也有設計成微柱多孔硅纖毛結構以分離40-100nm外泌體：不過，該方法由于過濾膜的粘附，可能會損失外泌體，并且過濾時的壓力和剪切力，可能會使外泌體變形受損。2、基于聚合物的沉淀技術。基于聚合物的沉淀技術通常包括將樣本與含聚合物的沉淀溶液混合，在4℃溫育并低速離心。用于聚合物沉淀的較常見聚合物之一是聚乙二醇（PEG）。用這種聚合物沉淀具有許多優點，包括對分離的外泌體影響小、pH中性等。目前大多數快速分離外泌體的商品化試劑盒都是基于此方法。然而基于聚合物的沉淀方法可能會同時分離非囊泡污染物（包括脂蛋白）而且，聚合物材料的混雜可能會影響下游分析外泌體提純試劑盒的特色與優勢：適用于多種物種。

外泌體的提取、分離方法：開發高效、快速、穩定，并且保持外泌體結構和生物功能完整性的方法，是目前外泌體應用于臨床的基礎和前提。從細胞上清和體液中提取分離外泌體的方法很多，但是外泌體的純度和產量卻和分離方法息息相關。通常分離步驟少、產率高，但是純度會受到影響。鑒于每種分離方法都有其優缺點，實驗可以根據樣本來源、下游實驗目的等，選擇合適的外泌體分離方法。2015年，國際囊泡組織(InternationSocietyforExtracelluarVesicles,ISEV)指出，簡單依靠一種分離方法得到的外泌體的純度和產量都難滿足實驗的需求。因此，推薦聯合使用各種方法，從而得到高純度和高產量的外泌體。主要來源于細胞內內溶酶體微粒內陷形成的多囊泡體，經多囊泡體外膜與細胞膜融合后釋放到胞外基質中。合肥外泌體提取試劑

外泌體提取：超離法是較常用的外泌體純化手段，采用低速離心、高速離心交替進行。唐山正規外泌體提取試劑廠家

外泌體鑒定：外泌體分離之后，需要經過一系列鑒定才能確定分離的是外泌體。鑒定方法從物理特征到表面分子標志物，多角度進行鑒定。l透射電鏡鑒定法：簡稱TEM，適合外泌體雙層囊膜超微結構觀察，即通常為茶托型或一側凹陷的半球形。l納米顆粒追蹤分析法：簡稱NTA，該方法能保證外泌體原始狀態、檢測速度快，檢測后能提供外泌體粒徑和濃度信息。lWesternblot分子標志物檢測：外泌體標志蛋白包括四跨膜蛋白家族，如CD9、CD63和CD81；細胞質蛋白，如肌動蛋白（Actin）和鈣磷脂結合蛋白（Annexins）；使用可截留100KD分子量的膜，通過離心截留上清中的外泌體，截留完成后。唐山正規外泌體提取試劑廠家