逆轉錄試劑是一類普遍應用于生物學和醫學研究的試劑，它們可以用于逆轉錄反應的實驗操作。逆轉錄反應是將RNA轉錄成DNA的過程，與正常的DNA轉錄成RNA的過程相反。逆轉錄試劑可以促進這個過程的進行，從而使得研究人員能夠更好地了解RNA的結構和功能。逆轉錄試劑通常由逆轉錄酶、緩沖液和酶的輔助因子組成。逆轉錄酶是一種酶類蛋白質，它可以在逆轉錄反應中起到關鍵的作用。緩沖液的主要作用是維持反應體系的PH值和離子強度，從而保證逆轉錄反應的順利進行。酶的輔助因子（如酶抑制劑）則可以幫助研究人員減少誤差和提高實驗的可重復性。逆轉錄是2代測序、單細胞測序等技術的前置步驟。加尾法逆轉錄酶生產商

反轉錄酶的注意事項，引物的選擇，OligodT：選擇OligodT時，要求RNA必須有PolyA，所以真核生物的mRNA都適用。適合長鏈甚至全長mRNA的RT，所以對RNA樣品的質量要求較高，較好不要有明顯的DNA污染、RNA降解和RNA斷裂。假如想探索新的mRNA進行RT反應，建議推薦使用OligodT引物。使用OligodT引物要比隨機引物和特異性引物的穩定性要好。特異性引物：特異性引物只能用你設計引物時的下游引物做RT，引物設計質量影響RT的結果，而且不同引物退火溫度本來就不相同，所以按照說明書按照一個溫度做不是較佳選擇，一般不推薦。武漢莖環法反轉錄蛋白檢測逆轉錄技術的發展使RNA研究得到極大便利。

逆轉錄實驗過程中要注意RNA樣品的保存、純化、處理和轉錄酶的選擇，逆轉錄實驗前要對反應體系進行無RNA和無反轉錄酶的對照。多逆轉錄酶都具有多種酶活性，主要包括以下幾種活性。①RNA指導的DNA聚合酶活性；以RNA為模板，催化dNTP聚合成DNA的過程。此酶需要RNA為引物，多為色氨酸的tRNA，在引物tRNA3′－末端以5′→3′方向合成DNA。反轉錄酶中不具有3′→5′外切酶活性，因此沒有校正功能，所以由反轉錄酶催化合成的DNA出錯率比較高。②RNaseH活性；由反轉錄酶催化合成的cDNA與模板RNA形成的雜交分子，將由RNaseH從RNA5′端水解掉RNA分子。

miRNA逆轉錄莖環法：首先需要進行RNA樣品制備，可選的方法有：離心柱法抽提（不必去除gDNA）；傳統Trizol法抽提（需要去除gDNA）。miRNA正向引物：需要分別設計。是否采用通用引物視情況而定，正向引物與通用反向引物不會形成二聚體時才能用。取200ul的PCR管，根據所得每組RNA的濃度C，每孔加入1000ng總RNA，按公式1000ng/C計算出所需RNA的體積x。然后按建議的20μL反應體系說明，依次向200μL的PCR管內加入下列試劑：加樣結束后，移液器吹打混勻，低速離心數秒。將逆轉錄PCR管放入PCR擴增儀內，調整參數：37℃15min（反轉錄反應），85℃5s（反轉錄酶的失活反應），4℃∞。反應結束后根據實驗需要進行熒光定量PCR或放入-20℃冰箱保存。說明：此處可以選擇U6下游引物作為U6的逆轉錄引物，注意相應地調整無酶水的體積和反應溫度。逆轉錄實驗中引物設計時要注意反向引物特異性和長度，避免循環擴增和特異性問題。

逆轉錄常見問題及解決方法之RNA濃度不高：a)、原始組織樣本或細胞量太少:提高加入量。b)、RNA發生降解:如果使用者確定提取RNA的試劑/器具沒有問題，RNA的降解通常發生在樣品破碎/勻漿階段。有兩個辦法可以徹底抑制內源RNase活性:1.立即加入裂解液并且徹底而迅速地勻漿。這只適合培養細胞及內源RNase含量較低的并且較容易勻漿的組織，2.對于內源RNase含量高或不易勻漿的組織，如肝臟、胰腺、脾臟、肌肉等，或植物組織，需要切成小塊后立即投入液氮冷凍，再按說明進行破碎/勻漿。c)、加入異丙醇后室溫沉淀10min或-20C冰沉淀30min即可，無需過夜沉淀。逆轉錄實驗過程中需要考慮RNA模板質量和RNA純化的方法。武漢莖環法反轉錄蛋白檢測

逆轉錄在病毒學、免疫學等領域有普遍的應用。加尾法逆轉錄酶生產商

逆轉錄酶實驗一步法與兩步法具有以下區別：一步法比兩步法更快速、簡便、減少了污染機會、減少了RNA二級結構、減少了PCR反應的錯配率；兩步法的優勢在于中間產物cDNA，便于保存；且第二步PCR只取逆轉錄反應產物的1/10進行反應，有利于PCR條件的調整，實驗重現性強；兩步法可以在第二步PCR反應體系中加入特異性引物，其靈敏度比一步法高；兩步法包括首先鏈cDNA合成和隨后的PCR反應，容易產生污染問題；兩步法的實驗預算要低于一步法。加尾法逆轉錄酶生產商