逆轉錄常見問題及解決方法之組織提?。篟NAisolater可以提取miRNA嗎?可以提取miRNA。他普遍適用于培養細胞、動物組織、微生物以及代謝較少的植物組織，如幼苗、幼葉等。提取的RNA有基因組DNA污染：a)、向裂解液中加入氯仿后，需要在低溫下(2-8°C)高速離心。離心后，RNA被抽提到上層的水相中，中、下層是有機相，含有氯仿。DNA即存在于中層。氯仿在常溫下會與水以一定比例互溶，因此，常溫離心會導致上層水相中也有少量基因組DNA污染。吸取上層液體時，應非常小心，避免吸到中間層和下層，為此失去一點得率，保留一些上清不吸是非常值得的。RNA應如何保存：建議分裝后在-80℃長期保存，在-20℃可以短期保存，但需要盡快使用。逆轉錄也可作為RNA表達譜的分析方法。廣州一步法逆轉錄報價

逆轉錄（reversetranscription）是以RNA為模板合成DNA的過程，即RNA指導下的DNA合成。此過程中，核酸合成與轉錄（DNA到RNA）過程與遺傳信息的流動方向（RNA到DNA）相反，故稱為逆轉錄。逆轉錄與反轉錄嚴格意義上來說沒有什么區別，但是逆轉錄是某些病毒的自主行為，如逆轉錄病毒，它們在整合到宿主細胞內前以RNA為模板形成DNA的過程；反轉錄是進行基因工程過程中，人為地提取出所需要的目的基因的信使RNA，并以之為模板人工合成DNA的過程。二者雖同為RNA→DNA的過程，但地點不同，相對性的來說，逆轉錄在體內，反轉錄在體外。武漢莖環法逆轉錄純度高逆轉錄實驗可以選擇加入RNA合成抑制劑RNAse防止RNA降解和污染。

逆轉錄實驗過程中要注意RNA樣品的保存、純化、處理和轉錄酶的選擇，逆轉錄實驗前要對反應體系進行無RNA和無反轉錄酶的對照。多逆轉錄酶都具有多種酶活性，主要包括以下幾種活性。①RNA指導的DNA聚合酶活性；以RNA為模板，催化dNTP聚合成DNA的過程。此酶需要RNA為引物，多為色氨酸的tRNA，在引物tRNA3′－末端以5′→3′方向合成DNA。反轉錄酶中不具有3′→5′外切酶活性，因此沒有校正功能，所以由反轉錄酶催化合成的DNA出錯率比較高。②RNaseH活性；由反轉錄酶催化合成的cDNA與模板RNA形成的雜交分子，將由RNaseH從RNA5′端水解掉RNA分子。

逆轉錄PCR的用途普遍，可用于分析基因的轉錄產物、檢測細胞中RNA病毒的含量、合成cDNA探針、直接克隆特定基因的cDNA序列等。如在臨床上RT-PCR可以用于遺傳病診斷、病癥檢測、檢測病人標本中的RNA病毒，如HAV、HCR、HIV等。在植物方面RT-PCR常用于研究環境脅迫對植物基因表達的影響，以及在特定的環境或生長階段中植物體不同部位基因表達的差異性。使用RT-PCR檢測分析RNA轉錄產物具有以下突出的優點：理論上可以檢測幾乎任何基因的轉錄產物；可以實現極為微量RNA樣品（ng級別）的檢測；樣品耐受性好，未經純化的粗制生物樣品也可以用于檢測。逆轉錄PCR在檢測病毒、診斷疾病等方面有普遍應用。

RT-PCR逆轉錄中模板的選擇：在RT-PCR實驗中，選擇總RNA或純化的mRNA作為模板進行逆轉錄十分重要。mRNA雖然能提供略高的靈敏度，但總RNA經常使用，具有較mRNA更重要的優勢。首先，其過程需要較少的純化流程，這保證了更好的回收模板和更好的把結果標準化為起始的細胞數。第二，避免mRNA富集步驟，為了避免不同mRNA的回收率而帶來結果偏移的可能性?？傊?，在大多數的應用中，目標基因的相對定量比檢測的非常靈敏度更重要，因此在多數情況下，總RNA更適用。逆轉錄實驗要使用高質量的反轉錄酶和逆轉錄引物，避免引物交叉污染。廈門一體化反轉錄

逆轉錄實驗中可以通過qPCR檢測逆轉錄反應效果。廣州一步法逆轉錄報價

RT-PCR逆轉錄引物設計原則：1.上下游引物要保守：擴增子長度需選擇一段保守片段（100-200bp）進行PCR擴增，選擇片段需跨越內含子，因內含子的基因組DNA序列不會被擴增，也可減少從污染的基因組DNA中擴增得到的假陽性風險。引物選取同樣需要保守。2.引物長度和Tm值：引物設計長度為18-25bp，Tm值在50-65℃之間，引物中GC含量在40-60%。設計引物時盡量避免出現4個或超過4個G堿基。RT-PCR實驗陰性對照：反轉錄陰性對照應包括在所有的RT-PCR的實驗中，用來檢測DNA是否污染（如基因組DNA或PCR產物）。該對照所指不加反轉錄酶，通過反轉錄過程得到cDNA在進行熒光定量PCR檢測。如檢測到擴增，則樣本中可能含有基因組DNA污染。廣州一步法逆轉錄報價