慢病毒載體既可以轉導分裂細胞也可以轉導非分裂細胞，被認為是安全的，并且可以提供長期的轉基因表達，是目前較通用的基因轉移方法之一。因慢病毒載體能有效地轉導靶細胞，如造血干細胞和T細胞，在細胞和基因藥物中的應用越來越guang泛。源自人類胚胎腎細胞的HEK293細胞系是成熟的生產LV的系統，因為它們非常適合懸浮培養并且易于轉染。在無血清培養基中的懸浮培養在大規模生產中具有優勢，因為它消除了批次之間的差異并降低了不定因子污染的風險。M-SAN HQ ELISA kit規格是12*8 strip，提高使用效率。海南等滲條件中鹽核酸酶

對于含包膜的病毒載體，如慢病毒LV、逆轉錄病毒RV等，在細胞培養上清液中收獲。而M-SAN HQ中鹽核酸酶，作為市場上更適合生理鹽條件的核酸酶，所以，M-SAN HQ成了包膜病毒載體生產的更好選擇。優勢在于：1. M-SAN HQ兼容多種細胞培養體系，在細胞培養鹽濃度條件下具有更優活性；2. M-SAN HQ酶活更高、酶切速度更快，縮短孵育時間；3. M-SAN HQ能夠高效剪切染色質到更小片段，簡化下游工藝流程；4. 相比Benzonase，M-SAN HQ用量減少1/2-2/3，降低了酶用量及生產成本。云南中鹽核酸酶70950M-SAN HQ中鹽核酸酶用在生產工藝流程中，在生理鹽條件下去除雙鏈及單鏈的DNA及RNA。

宿主細胞DNA殘留的擔憂是基于致ai風險理論，特別是生產細胞系所包含的致ai序列，比如較常見腺病毒基因E1A和E1B（HEK293, PerC.6 和CAP 細胞系），人乳tou瘤病毒E6和E7基因（HeLa細胞系)等。當使用致ai細胞系生產AAV時，下游純化須盡可能減少殘留DNA。工業上一般使用核酸酶分解殘留DNA，普遍認為小于200 bp的DNA片段可有效降低致ai風險。宿主細胞蛋白殘留與免疫原性、炎癥或過敏性休克有關。盡管與非人類的生產原料相比（非人類細胞系如BHK21或昆蟲細胞，以及輔助病毒如HSV、腺病毒、桿狀病毒），人類細胞免疫原性比較弱。

逆轉錄病毒載體可以將7.5Kb左右外源基因整合入靶細胞基因組，并穩定持久地表達，已經在批準的CAR-T產品和許多臨床產品中得到應用。Shou個成功的基因藥物臨床試驗是利用小鼠白血病病毒(Murin Leukemia Virus,MLV，gamma逆轉錄病毒)作為基因轉移載體醫治兒童的X性染色體連鎖嚴重聯合免疫缺陷（SCID-X1）。目前上市的6個細胞藥物產品全部采用逆轉錄病毒（3個為gamma逆轉錄病毒載體，3個慢病毒載體）作為基因轉移載體。逆轉錄病毒載體目前常用的主要有兩個：gamma逆轉錄病毒載體(Retroviral vector,RV)和慢病毒載體(Lentivirus vector,LV)。兩種病毒均屬于逆轉錄病毒科，在自身攜帶的逆轉錄酶催化下將其正鏈RNA均逆轉錄為cDNA。病毒顆粒比較大，約為100nm（70-100nm，有的至200nm）,外層為表面突起的脂蛋白套膜，套膜內為20面體的衣殼（capsid）,核衣殼內由一螺旋結構的核酸。相比全能核酸酶，M-SAN HQ中鹽核酸酶能將HCD酶切成更小片段，破壞核小體結構。

殘留的宿主DNA是生產中產生的雜質，其存在潛在的致瘤性、傳染性和免疫原性等風險。相關研究表明，基因的大小普遍在200bp以上，因此大于200bp有可能會有一定的致病性，而且殘留DNA片段越大，生物制品的風險等級越高。因此，各國監管機構對其提出了嚴格要求。美國食品藥品監督管理局（FDA）在《關于人類基因zhiliao新產品生產指導文件》中明確指出HCD的片段要小于200bp。2022年5月，國家藥品監督管理局藥品評審中心（CDE）發布的《體內基因藥物產品藥學研究與評價技術指導原則（試行）》中也明確指出需對DNA殘留量和殘留片段大小進行控制，建議盡量將DNA殘留片段的大小控制在200bp以下。中鹽核酸酶的生產在符合ISO13485:2016體系基礎上，增加了cGMP相應要求。湖南等滲條件中鹽核酸酶70950-202

中鹽核酸酶具有純度高（≥99%）、 內毒水平低（<0.25EU/1kU）的特點；海南等滲條件中鹽核酸酶

在生物工藝中，核酸酶的主要作用是高效消化宿主細胞DNA（HCD），并將其分解成足夠小的片段，以便在下游純化過程中去除。雖然大多數核酸酶可以在生理鹽條件下高效地將裸DNA降解成微小片段，比如Benzonase和SANs都可以把dsDNA分解成小于8nt的寡核苷酸鏈，但實際生產中的核酸污染情況更加復雜。HCD通常以染色質形式存在，與細胞裂解碎片、病毒顆粒等結合在一起，影響核酸酶的識別及剪切。因此，HCD去除的關鍵在于——核酸酶如何在復雜的生產體系中識別并剪切HCD。海南等滲條件中鹽核酸酶