從細胞中釋放AAV載體的基本機械技術是反復冷凍/解凍，然后是低速離心步驟然而，但是這種技術很難放大生產。機械均質，如法式壓濾，是另一種裂解方法，在這種方法中，細胞膜在高壓剪切力作用下發生破裂。雖然這種方法是可放大的，但是由于剪切應力引起的聚集和沉淀，往往會導致產品損失。而化學裂解方式，例如Triton X-100在病毒載體純化過程有較高的總收率，而且易于放大。但是也有其局限性。研究表明，Triton X-100造成了一些急性口服毒性、眼睛損傷、皮膚刺激和慢性水生毒性。因此，該去垢劑在2016年被歐洲化學品管理局（European Chemicals Agency）被列為需要高度關注的物質。SAN HQ高鹽核酸酶是一種新型的、耐高鹽的工程化內切酶；江西SAN HQ高鹽核酸酶70950-202

一個美國客戶做了對照實驗，比較Benzonase和SAN HQ高鹽核酸酶純化病毒載體的效率。實驗設計如下，HEK293細胞轉染及培養后，分別取了150Million的293細胞進行裂解，分別在各自適宜的條件下（即SAN HQ組反應條件為500mM鹽濃度，而Benzonase組反應條件是150mM鹽濃度）加入等量的酶（0、2kU、3kU、4kU、5kU、6kU），37°孵育1hr，加入Picogreen染料后檢測DNA的殘留量。結果發現，SAN HQ高鹽核酸酶組用更少的酶得到了更好的去除效果（即2kU的SAN HQ消化結果明顯優于6kU的Benzonase），且SAN HQ的高純化效率是非血清型依賴的。江蘇SAN HQ TF高鹽核酸酶在AAV生產過程中鹽濃度是純化工藝的重要參數之一。

?通過三質粒瞬轉體系生產病毒載體，會引入宿主細胞DNA殘留（HCD）、蛋白殘留（HCP）、工藝雜質（如antibiotics、核酸酶等外源物質）等污染，存在潛在的致瘤性和免疫原性等風險。藥品監管機構一般允許生物制品中存在10ng/dose以下的殘留DNA。此外，根據雜質來源、工藝以及產品類型不同，也會對HCD限度做不同要求。為了達到這個要求，一般通過核酸酶處理和色譜聯用的方法。一般在細胞培養液裂解/收獲、澄清收獲及超濾濃縮等環節加入核酸酶處理，需要工藝摸索來確認處理方式。

近年來，AAV在cancer疾病的醫治中顯示出巨大的價值。AAV作為基因藥物的載體已在肺、肝、眼、腦、肌肉等多個臨床試驗(超過100次)中得到應用，并在盲癥和血友病方面取得了巨大成功。2012年，AAV1載體編碼的脂蛋白脂肪酶成為歐盟批準的shou個用于醫治脂蛋白脂肪酶缺乏癥的基因產物(Glybera)。5年后，另一種AAV介導的基因藥物(Luxturna)隨后獲準在美國上市。基于AAV9的基因療(Zolgensma)也被用于醫治脊髓性肌肉萎縮。腺病毒在基礎和實驗研究有這么強的生命力原因在于：宿主范圍廣，對人致病率低；腺病毒粒子相對穩定，病毒基因重排頻率低；安全性高，不整合到染色體中，無插入致病基因，不干擾其他宿主基因。ArcticZymes致力于提供高質量產品，具有好的批間一致性、穩定可靠的質量。

殘留的宿主DNA是生產中產生的雜質，其存在潛在的致瘤性、傳染性和免疫原性等風險。相關研究表明，基因的大小普遍在200bp以上，因此大于200bp有可能會有一定的致病性，而且殘留DNA片段越大，生物制品的風險等級越高。因此，各國監管機構對其提出了嚴格要求。美國食品藥品監督管理局（FDA）在《關于人類基因zhiliao新產品生產指導文件》中明確指出HCD的片段要小于200bp。2022年5月，國家藥品監督管理局藥品評審中心（CDE）發布的《體內基因藥物產品藥學研究與評價技術指導原則（試行）》中也明確指出需對DNA殘留量和殘留片段大小進行控制，建議盡量將DNA殘留片段的大小控制在200bp以下。宿主細胞DNA主要以染色質形態存在，其中的組蛋白通過離子相互作用及疏水相互作用與DNA緊密結合；黑龍江500mM鹽濃度條件高鹽核酸酶70921-202

SAN HQ終產品放行檢測包括微生物、Fungus及Endotoxin檢測等；江西SAN HQ高鹽核酸酶70950-202

SANHQ(生物工藝級)是用Pichiapastoris表達的重組非特異性內切核酸酶，廣泛應用于生產工藝流程中，有效去除核酸污染。該酶在高鹽濃度下具有良好的活性，應用在生產工藝流程中提高去除效率和目標產物產量。在生物制品生產，如AAV載體及腺病毒載體疫苗生產中，宿主細胞DNA殘留是關鍵質量參數之一。宿主細胞DNA主要以染色質形態存在，其中的組蛋白通過離子相互作用及疏水相互作用與DNA緊密結合，從而影響DNA的檢測與酶切處理。SAN HQ（生物工藝級）高鹽核酸酶江西SAN HQ高鹽核酸酶70950-202