在生物工藝中，核酸酶的主要作用是高效消化宿主細胞DNA（HCD），并將其分解成足夠小的片段，以便在下游純化過程中去除。雖然大多數核酸酶可以在生理鹽條件下高效地將裸DNA降解成微小片段，比如Benzonase和SANs都可以把dsDNA分解成小于8nt的寡核苷酸鏈，但實際生產中的核酸污染情況更加復雜。HCD通常以染色質形式存在，與細胞裂解碎片、病毒顆粒等結合在一起，影響核酸酶的識別及剪切。因此，HCD去除的關鍵在于——核酸酶如何在復雜的生產體系中識別并剪切HCD。M-SAN HQ中鹽核酸酶生產符合ISO 13485:2016規范，提供相關文件用于申報。上海國內中鹽核酸酶

一般來說，生物生產工藝用的核酸酶以BenzonaseTM（BenzonaseTM是Merck的注冊商標）為主，能高效降解任何形式（雙鏈、單鏈、線狀、環狀）的DNA和RNA。該酶來自于大自然界普遍存在的S.Marcescen，通過E.coli發酵生產得到。該酶的適宜反應條件是低鹽濃度范圍（<100mM鹽濃度），且酶活隨著鹽濃度上升而下降，在300mM鹽濃度時酶活幾乎喪失。對于細胞基因藥物常用的兩種病毒載體LV和AAV，LV由于含有脂包膜結構一般都在生理鹽條件下存在，而AAV在高鹽條件下不易團聚、更穩定。而在生理鹽濃度及更高濃度條件下，Benzonase活性受到抑制。河南哪里有中鹽核酸酶國內代理相比全能核酸酶，M-SAN HQ中鹽核酸酶能將HCD酶切成更小片段，破壞核小體結構。

倫敦大學學院（UCL）的工藝開發團隊，在細胞藥物Car-T涉及的慢病毒（Lentivirus，LV）生產過程中，比較了Benzonase和M-SAN HQ中鹽核酸酶在酶活、酶切時間、各階段LV的穩定性等方面的表現，發現在生理鹽條件下M-SAN HQ中鹽核酸酶酶活更高、酶切時間更短，同時用納米顆粒分析（NTA）技術確認M-SAN HQ組得到的LV病毒顆粒聚集更少、穩定性更高。他們會繼續探究HCD是否影響LV的穩定性，及對LV侵染效率和生命周期是否有影響。通過更多研究，我們探究M-SAN HQ中鹽核酸酶助力LV生產的關鍵機制。

在不同的鹽濃度條件下，AAV病毒載體的存在形式不同。低鹽濃度條件下，AAV病毒顆粒表面會通過電荷作用等非特異結合到HCD上，從而產生病毒顆粒團聚現象。隨著溶液鹽濃度上升，AAV病毒顆粒與HCD的離子相互作用會被破壞，AAV病毒顆粒會逐漸解離。當鹽濃度升到更高范圍（>400mM左右），AAV病毒顆粒與HCD的結合更弱，AAV顆粒更穩定。因此，在高鹽濃度溶液中，AAV顆粒更加穩定，且有數據表明高鹽濃度不會削弱AAV的侵染能力。所以，我們推薦提高AAV病毒生產中的鹽濃度。M-SAN HQ ELISA Kit能夠定量檢測M-SAN HQ中鹽核酸酶殘留。

細胞基因藥物領域的進展使得對高質量基因轉移技術的需求急劇增加，包括高質量慢病毒載體(LV)的大規模生產。宿主細胞DNA殘留（HCD）是一類主要的工藝相關雜質，對下游純化帶來很大挑戰。根據相關法規要求，需要去除HCD才能達到臨床級LV。HCD去除是通過核酸酶處理聯合下游工藝（DSP）共同實現的。文章作者研究了兩款核酸酶M-SAN HQ中鹽核酸酶(ArcticZymes Technologies)和Benzonase(Merck)對HCD去除效率的差別，其下游工藝包含過濾澄清及TFF超濾。M-SAN HQ ELISA kit檢測產品能定量檢測該核酸酶，與中鹽核酸酶搭配用在medicine生產。鹽城中鹽核酸酶聯系方式

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跟其他類型的核酸酶一樣，SAN HQ高鹽核酸酶和M-SAN HQ中鹽核酸酶的滅活方法有很多，分為可逆滅活及不可逆滅活。金屬離子螯合劑如EDTA會可逆抑制兩者的活性，加入的EDTA濃度一般是溶液中Mg2+濃度的2倍左右即可完全抑制活性；后續補加過量的Mg2+即可恢復核酸酶活性。加熱、還原劑（如DTT）、咪唑、甘油及表面活性劑（如高于15%濃度的Triton X-100、SDS、尿素等）等都可以使其不可逆失活。在生物工藝流程，需要結合上下游應用需要選擇合適的方法去除或滅活核酸酶。上海國內中鹽核酸酶