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來源: 發布時間:2024-06-07

細胞轉染的原理、操作步驟以及小技巧:一、脂質體(Liposome)轉染方法原理脂質體作為體內和體外輸送載體的工具,已經研究的十分普遍,中性脂質體是利用脂質膜包裹DNA,借助脂質膜將DNA導入細胞膜內。帶正電的陽離子脂質體,DNA并沒有預先包埋在脂質體中,而是帶負電的DNA自動結合到帶正電的脂質體上,形成DNA-陽離子脂質體復合物,從而吸附到帶負電的細胞膜表面,經過內吞被導入細胞。優點:與其它方法相比,有較高的效率和較好的重復性,它適用于把DNA轉染入懸浮或貼壁培養細胞中,是目前條件下較方便的轉染方法之一。陽離子脂質體轉染試劑脂質轉染試劑,以其適用宿主范圍廣。深圳正規細胞高效轉染試劑哪里買

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細胞轉染效率低下的幾個大坑:1.試劑過期有時候轉染效率低下,還要考慮會不會存在試劑過期的情況。毛博當年做轉染整整半年,百思不得其解。較后發現,原來是Lipofectamine2000過期了。換了之后,立馬成功。根據我的經驗,盡量使用開封半年內的,因為過了半年后,就算沒有過失效期,但是細胞毒性較大增加,而轉染效率卻較大下降。千萬不要為了省錢,影響實驗進度哈。2.未加血清轉染后未及時加入血清,會導致細胞大量死亡。一般要在轉染后的4-6小時換液且換為有血清的培養基。根據毛博的經驗,其實也可以在原來的無血清培養基里面滴加血清。這個時候,較好不要換液,不要打擾細胞,讓它安安靜靜地休息。但是也不能過早加入血清。過早的話,會引起未轉染的細胞瘋狂生長。那么,什么是較佳時機呢?在20%的細胞變圓的時候,就是加血清的較佳時機。徐州鄭州細胞高效轉染試劑到時后,根據細胞種類決定是否移除混合液。

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細胞轉染效率影響因素:1.細胞密度一般來說,當細胞密度達到60%~80%時進行轉染可以取得較高的轉染效率,過低或過高都會影響轉染效果。2.細胞生長狀態這點非常關鍵,很多時候傳代次數太少或者太多都將導致細胞對轉染試劑敏感度的改變。因此,為了提高轉染效率以及轉染穩定性、降低細胞毒性,應盡量使用適度傳代的細胞系,并在不同次實驗時保持細胞傳代次數的一致性。3.細胞種類不同細胞種類的細胞在做轉染時所需要的轉染體系是不同的,不能一種體系用在所有類型細胞的轉染實驗。

細胞電轉染實驗的幾點建議:1.電場強度要合適合適的電場強度對于電轉染實驗非常重要,電場強度不能過高,過高會增加細胞的死亡率;也不能過低,過低不能增加膜的通透性或在膜上形成小孔。不同細胞系具有不同的較佳場強值,實驗前應測定所轉染細胞系的較佳電場強度。2.細胞狀態要好用于電轉的細胞一般選取處于對數生長期的細胞(15代以內,傳代后2d)。因為處于對數生長期的細胞分裂旺盛,表面結構致密比穩定期的細胞差,電轉后,細胞膜的恢復能力強,而且處于有絲分裂期的細胞更容易接受外源DNA.重新接種于培養皿或瓶,較好在轉染前4小時換一次新鮮培養液。

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細胞轉染,你至少要掌握以下幾點:主要有下面幾種方法::化學法:磷酸鈣法、DEAE-右旋糖苷法、陽離子脂質體法;物理法:電穿孔法、顯微注射法、顆粒傳遞法;細菌介導法:逆轉錄細菌、腺細菌A.陽離子脂質體法:帶正電的脂質體與核酸帶負電的磷酸基團形成復合物被細胞內吞。特點:簡單通用,適用性廣,轉染效率高,重復性好,但轉染時需除血清,轉染效率隨細胞類型變化大。由于脂質體復合物與貼壁細胞的接觸機會遠大于懸浮細胞,所以貼壁比懸浮轉染效率要高。懸浮細胞建議使用電穿孔法。B.電穿孔法:利用高壓電脈沖對細胞膜的干擾,使其形成利于核酸進入的微孔。細胞鋪板密度用于轉染的較佳細胞密度根據不同的細胞類型或應用而異。深圳正規細胞高效轉染試劑哪里買

其可降解性對體內應用也具有重要的意義。深圳正規細胞高效轉染試劑哪里買

細胞轉染那些事兒:1.設置陰性和陽性對照:一般在轉染后24-48h,靶基因即在細胞內表達。可依據不同的實驗目的,24-48h后即可進行靶基因表達的檢測等實驗。2.轉染后效率的檢測方法:觀察轉染后細胞熒光情況;qPCR驗證;WB檢測敲減或過表達蛋白。3.轉染效率低,可采取以下兩種方法:1)復轉染,即轉染后12-24h再進行轉染,前提是該細胞對脂質體的耐受性較好,轉染后細胞死亡數較少。2)通過藥篩來殺死未轉入成功的細胞,前提是該質粒帶有物品抗性的基因。4.電轉時,不同的細胞需要的電壓是不一樣的,需要做預實驗,摸索較佳條件。對于大多數細胞而言,較佳電壓位于250-1250v/cm。電擊后,應該將DNA和細胞混合液在室溫下放置10min,使細胞恢復損傷。深圳正規細胞高效轉染試劑哪里買

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