細胞凍存是細胞保存的主要方法之一。利用凍存技術將細胞置于-196℃液氮中低溫保存，可以使細胞暫時脫離生長狀態而將其細胞特性保存起來，這樣在需要的時候再復蘇細胞用于實驗。細胞凍存的原理：細胞凍存及復蘇的基本原則是慢凍快融，實驗證明這樣可以較大限度的保存細胞活力。目前細胞凍存多采用甘油或二甲基亞砜作保護劑，這兩種物質能提高細胞膜對水的通透性，加上緩慢冷凍可使細胞內的水分滲出細胞外，減少細胞內冰晶的形成，從而減少由于冰晶形成造成的細胞損傷。復蘇細胞應采用快速融化的方法，這樣可以保證細胞外結晶在很短的時間內即融化，避免由于緩慢融化使水分滲入細胞內形成胞內再結晶對細胞造成損傷。血清批次、品質間差異導致凍存液的批次間差異。開封正規無血清細胞凍存液單價

凍存細胞注意事項：凍存細胞系以備將來之用時，必須遵守以下原則。我們建議您嚴格遵守您所用細胞系附帶的操作說明，以便獲得較佳結果。在細胞處于生長期密度達到70-90%的情況下進行培養細胞的凍存，并且細胞傳代盡可能靠前。確保凍存前活細胞百分比至少為90%。請注意較佳凍存條件取決于所用細胞系。細胞應緩慢冷凍，可使用可控制降溫速度的低溫冰箱或者低溫冷凍容器，使溫度每分鐘大約降低1°C。必須使用推薦的凍存培養基。凍存培養基中應含有DMSO或者甘油等冷凍保護劑廈門唐山無血清細胞凍存液無血清凍存液使用方法：將凍存管直接轉移至-80C水箱中冷凍保存。

細胞凍存，我們應該注意哪些事項：1、液氮內的細胞凍存較長時間不要超過半年，凍存在液氮中的細胞應一段時間內進行更替。一個細胞系在培養一個月后，可復蘇一管新的細胞確保其質量沒有發生太大變化，傳代幾次后，再凍存留種。2、細胞復蘇時，為保證獲得較高的存活率和接種率，應盡可能的快速完成復蘇，以避免在升溫過程中細胞內部晶體的產生。書面介紹的復蘇溫度是37℃-42℃，但是本人在實際操作中發現40℃環境下復蘇效果較好。3.復蘇時使用的培養基和凍存時使用的培養基中的血清盡量保證同一批次。

細胞凍存的操作步驟：1.配制含10%DMSO或甘油、10～20%小牛血清的凍存培養液；2.取對數生長期的細胞，去除舊培養液，用PBS清洗。3.去除PBS，加入適量胰蛋白酶（覆蓋培養皿表面）把單層生長的細胞消化下來；4.離心1000rpm，5min；5.去除胰蛋白酶，加入適量配制好的凍存培養液，用吸管輕輕吹打使細胞均勻，計數，調節凍存液中細胞的較終密度為5×106/ml～1×107/ml；6.將細胞分裝入凍存管中，每管1～1.5ml；7.在凍存管上標明細胞的名稱，凍存時間及操作者；8.凍存：標準的凍存程序為降溫速率-1～-2℃/min；當溫度達-25℃以下時，可增至-5℃～-10℃/min；到-100℃時，則可迅速浸入液氮中。也可將裝有細胞的凍存管放入-20℃冰箱2h，然后放入-70℃冰箱中過夜，取出凍存管，移入液氮容器內。可以防止或減少冷凍冰晶對細胞的損傷作用。

密度過高會讓細胞沒有足夠的生存空間，密度過低會讓細胞無法互相連接健康生長。建議大家在細胞接種前，一定要調整好適合細胞生長的濃度，提高細胞的存活率。溫度控制不達標慢凍快融是細胞凍存復蘇的關鍵詞之一。常規的凍存操作中，都會要求嚴格的梯度降溫，常見的是-4℃→-20℃至-40℃→-80℃→液氮，一定要避免溫度原因導致細胞自取；除非使用了成分經過優化、經過嚴格測試的凍存液，才能免去程序降溫這個繁瑣的步驟。保存的時候也要保證整個細胞都是處于液氮的液面下方，避免溫度對細胞存活的影響。不同的凍存方法替代了不同的凍存體系。廈門正規無血清細胞凍存液廠家批發價

無血清細胞凍存液：一些保護劑，易于穿透細胞，避免細胞內部水分子形成冰晶損傷細胞。開封正規無血清細胞凍存液單價

細胞凍存，我們應該注意哪些事項：1、有文獻表明，細胞以l℃/min的速度冷凍存活率較髙，因為這一速度可以很好的控制細胞內部晶體的產生。我們實際操作不可能將速度控制的這么精確，目前慣用的就是4℃30min、-20℃1h30min、-80℃2h后轉入液氮中。2、正常情況下，經過-20℃1h30min這一步后，凍存管內的細胞已經處于凝固狀態，如果此時凍存管內還是液體，很可能是DMSO或冰箱冷凍功能出現了問題。如若遇到這種情況，不能因為時間到了，就把把液體狀態的凍存管放置到液氮中，可以適當延長在-20℃環境下的冷凍時間30-60分鐘，直至凍存液凝固后再放到液氮中。開封正規無血清細胞凍存液單價